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Artículos

Vol. 3 Núm. 1 (2013)

EVALUACIÓN DE LA ACTIVIDAD ANTIOXIDANTE, VITAMINA C DE ZUMOS CÍTRICOS DE LIMA DULCE (Citrus limetta), LIMÓN TAHITÍ (Citrus latifolia), LIMÓN RUGOSO (Citrus jambhiri Lush) Y MANDARINA CLEOPATRA (Citrus reshni) ALMACENADOS EN REFRIGERACIÓN

Enviado
August 27, 2018
Publicado
2018-08-27

Resumen

El presente trabajo de investigación se desarrolló en los laboratorios del CIPNA y Análisis de Alimentos –
UNAS. Los objetivos fueron: determinar el pH, acidez y los sólidos solubles totales, cuantificar la vitamina
C y evaluar la capacidad antioxidante mediante la inhibición de los radicales libres 2,2-Difenil-1-
picrilhidrazil (DPPH+) y (2,2´-azinobis(3-etilbenzotiazolino‐6-ácido sulfónico) ABTS+ en zumos cítricos
almacenados a 5 °C/ 20 días. Las muestras fueron zumos de lima dulce, limón tahití, limón rugoso y
mandarina cleopatra; los resultados fueron analizados mediante el diseño completo al azar (DCA) y la
prueba de tukey (p≤0,05), utilizando el programa SAS versión 9.0. Los resultados fueron: lima dulce pH
5,80; acidez 0,15 % y 6,80 Brix; limón tahití pH 2,39; acidez 6,70 % y 6,20 Brix; limón rugoso pH 2,13;
acidez 7,08 % y 6,0 Brix; mandarina cleopatra pH 2,27, acidez 7,79 % y 6,50 Brix. El coeficiente de
inhibición (IC50) frente al radical DPPH+ fueron lima dulce 354; limón tahití 457; limón rugoso 420;
mandarina cleopatra 482 µg/ml respectivamente; frente al radical ABTS+ para lima dulce 371; limón tahití
469; limón rugoso 432; mandarina cleopatra 513 µg/ml respectivamente; mostrando un decrecimiento de
la actividad antioxidante de todos los zumos cítricos frente al radical DPPH+ y ABTS+ a los 5 °C/ 20 días.
El contendido de vitamina C fue: lima dulce 50,2; limón tahití 21,1; limón rugoso 27,7 y la mandarina
cleopatra 16,1 mg.vit.C/100 ml zumo respectivamente; observándose un decrecimiento de 31, 44, 26, 47
% de la vitamina C a los 5 °C/ 20 días.

Palabras clave: Cítricos, zumos, antioxidante, vitamina C, almacenamiento, refrigeración

Referencias

  1. Garcia L, Del Rio C, Porras C, Fuster S, Ortuño T. El limón y sus componentes bioactivos. Consejería de agricultura, agua y medio ambiente. Murcia, España; 2003.
  2. Horst–Dietertscheuschner G, Fundamentos de tecnología de los alimentos. Trad. Fernando Gonzales – Fierro Marcilla. 2 ed. Zaragoza, España. Acribia S.A. 2001; 746 p.
  3. Ordoñez - Santos L, Yoshioka – Tamayo L. Cinética de degradación térmica de vitamina C en pulpa de mango (Mangifera indica L). Vitae, REDALYC, 2012; 19(1):81 – 83.
  4. Figueroa R, Tamayo J, Gonzales S, Moreno G, Vargas L. Actividad antioxidante de antocianinas presentes en cáscara de pitahaya (Hylocereus undatus). Revista Iberoamericana de Tecnología Postcosecha, REDALYC, 2011; 12(1):44 – 50.
  5. Cuellar C, Anzola V. Comparación de la capacidad antioxidante del arazá (Eugenia stipitata Mc vaugh) durante la maduración. Vitae, REDALYC, 2012; 19(1):385 – 387.
  6. AOAC. Official Methods of analysis of AOAC (Association of Official Analytical Chemist). International; Agricultural Chemicals, Foods, Contaminants and Drugs. V1 y V2 Arlington: A.O.A.C. Inc. 1997; 2658 p.
  7. AOAC. Official Methods of analysis of AOAC (Association of Official Analytical Chemist). International; Agricultural Chemicals, Foods, Contaminants and Drugs. ISED Gaithersburg Md. USA AOAC International. 1964; 1141 p.
  8. AOAC. Official Methods of analysis of AOAC (Association of Official Analytical Chemist). International; Agricultural Chemicals, Foods, Contaminants and Drugs. ISED Gaithersburg Md. USA AOAC International. 1995; 1192 p.
  9. Hung C, Yen G. Antioxidant activity of phenolic compounds isolated from mesona procumbens hemsl. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2002; 50(10):2993-2997.
  10. Sandoval M, Okuhama N, Angeles F. Técnicas de Investigación para determinar la actividad antioxidativa y anti-inflamatorio de plantas medicinales de la Amazonía. International work shop. Iquitos – Perú, 2001; 1- 25 p.
  11. Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Pannala A, Yang M, Rice-Evans C. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay.Free Rad. Biol. Med. 1999; 26:1231 – 1237.
  12. Acevedo B, Avanza J. Actividad antioxidante de los zumos de lima. Efecto de la temperatura. Comun. Cient. y tecnológicas, Corrientes, Argentina. 2004; 12(4): 32 – 45.
  13. Garza S, Sanchis V. Principales agentes microbiológicos causantes de alteraciones en zumos, concentrados y cromogenados de frutas. Rev. Alimentaria, Lleida. 1998; 5(2): 31 - 35.
  14. Pérez – Aparicio J, Zapata – Soberá L, Lafuente-Rosales V, Toledano – Medina M. Almacenamiento de naranjas cv. “Salustiana” y cv. “Valencia” y su influencia en la calidad del zumo. Rev. Iber. de Tecnología Postcoseha, REDALYC. Ciudad de México, México. 2008; 9(2): 113 – 120.
  15. Dadzie B, Orchard J. Evaluación rutinaria postcosecha de híbridos de bananas y plátanos: Criterios y métodos. British Overseas Development Administration. Honduras. Guías técnicas Inibap Nº 2. 2006; 73 p.
  16. Sogi D, Siddiq M, Roidoung S, Dolan D. Total phenolics, carotenoids, ascorbic acid, and antioxidant properties of fresh – cut mango (Mangifera indica L.) as affected by infrared heat treatment. Journal of Food Science. 2012; 77(11): 1197 -1202.
  17. Yekeler F, Ozyurek H, Tamer C. A functional beverage: lemonade. International science index, Bursa/Turkey. 2013; 79(16358): 608 –611.
  18. Ordoñez E, Reátegui D. Determinación de la actividad antioxidante, polifenoles y vitamina C en arazá (Eugenia stipitata Mc Vaugh), Guanabana (Annona muricata L.), Guayaba (Psidium guajavaL.), Maracuya (Pasiflora edulis), Papaya (Carica papaya L.), Carambola (Averrhoa carambola L.), Taperiba (Spondias bombín L.) y Lima (Citrus Limetta). Artículo científico. Tingo María, Perú. Universidad Nacional Agraria de la Selva. 2009; 27 p.
  19. Muñoz A, Saucedo C, Garcia C, Robles M. Evaluación de la calidad y tiempo de almacenamiento del fruto de tres variedades de limón mexicano. Revista iberoamericana detecnología poscosecha, estado de México. 2011; 12(2):156-163.
  20. Braverman J. Introducción a la bioquímica de alimentos. Trad. Por Bernabé Sanz Pérez y Justino Burgos Gonzales. 3 ed. Barcelona, España. Omega S.A. 1980; 355 p.
  21. Tarrega J. Efecto de la presión de homogeneización sobre la actividad antioxidante del zumo de mandarina (Var.ortanique). Tesis Msc. Ciencia e Ingeniería de Alimentos. Valencia, España. Instituto de Ingeniería de Alimentos para el Desarrollo. 2011; 20 p.
  22. Cano A, Arnao M. Actividad antioxidante hidrofílica y lipofílica y contenido en vitamina C de zumos de naranja comerciales. Cienc.Tecnol. Aliment. Murcia, España. 2004; 4(3): 185 – 189.
  23. Puttongsiri T, Haruenkit R. Changes in ascorbic acid, total polyphenol, phenolic acids and antioxidant activity in juice extracted from coated kiew wan tangerine during storage at 4, 12 and 20ºC. J. Nat. Sci. 2010; 44 (2):280 – 289.
  24. Mariñas M. Tratamiento ultrasonido de pulpa de camu camu (Myrciaria dubia Mc Vaugh H.B.K) y estudio de sus componentes bioactivos. Tesis Ing. Industrias Alimentarias. Tingo María, Perú. Universidad Nacional Agraria de la Selva. 2010; 76 p.
  25. Sun Y, Qiao L, Shen Y, Jiang P, Chen J, Ye X. Phytochemical prolife and antioxidant activity of physiological drop of citrus fruits. Journal of Food Science.Institute of Food Technologists. 2013;78(1):37-42.
  26. Kumar R, Vijay S, Khan N. Comparative nutritional analysis and antioxidant activity of fruit juices of some Citrus spp. Octa. J. Biosci. Department of Botany, college Kairana. 2013; 1(1): 44 – 53.

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